低温胁迫下糯玉米种子,萌发过程中的综合代谢,转录组学分析

糯玉米生长周期短,多次种植指数高。然而,早春、晚秋和冬季种植后,易受低温(LT)影响,降低了出苗率和产量。因此,分析糯玉米在LT胁迫下的响应机制具有重要意义。

玉米根据种子中胚乳的淀粉成分可分为三种类型,即普通玉米,糯玉米和甜玉米。糯玉米是玉米突变后人工培育的,受到许多消费者的青睐。因其营养丰富、风味独特而具有很高的价值。玉米是最重要的嗜热作物之一,易受低温(LT)影响。由于中国早春气温不稳定,作物在播种后经常受到突然的LT影响。LT对作物生长、生产力和质量等有巨大影响。

种子萌发的过程是从吸水到下胚轴延伸的一系列生物变化。玉米种子在发芽过程中受到一系列因素的影响,温度是影响种子萌发的重要外部条件之一。LT是影响植物生长、发育和空间分布的主要非生物胁迫之一,往往会降低和延缓种子的发芽率,甚至导致发芽失败。

为了抵抗LT胁迫,植物已经开发出许多方法来平衡胁迫引起的损伤效应,例如增加脯氨酸的含量,增加解毒物质或酶的活性。植物在被LT诱导后,可以通过合成抗氧化剂、增加细胞内渗透保护物质、适应物理结构来激活防御机制,以恢复植物体内新陈代谢和物质的平衡。

植物内源性激素在种子萌发中起着至关重要的作用。赤霉素(GA)是一种重要的调节激素,可以打破种子休眠并促进种子萌发。活性氧(ROS)可诱导GA合成相关基因的表达,从而促进种子萌发。

脱落酸(ABA)的积累将对种子萌发产生显著的抑制作用。在LT胁迫下,种子中积累的ABA可以抑制ROS的产生和抗坏血酸(ASC)的积累,从而抑制水稻种子的发芽。ABA与GA之间存在拮抗作用,可共同调节种子的发芽和休眠。同时,GA可以降低ABA的含量,促进种子的发芽。ABA可抑制种子萌发,阻碍GA的促进。

细胞膜是冷冻损伤和冷驯化的主要部位。膜流动性对于维持膜蛋白和膜本身的功能活性非常重要,并且直接受温度影响。研究表明,细胞膜的损伤主要是由LT作用下脂肪酸不饱和和脂质过氧化引起的。

脂质过氧化引起的丙二醛(MDA)含量越高,植物的抗寒性就越差。因此,当植物受到LT胁迫时,脂肪酸脱氢酶可以调节脂肪酸不饱和度,增加膜流动性,从而提高植物的耐寒性。同时,脂质是细胞膜的重要组成部分,为植物种子发芽和幼苗生长提供能量。可溶性糖作为膜脂质的组合,对维持细胞膜的稳定性有一定的作用。

种子中有大量的基因可以被LT诱导,并能快速产生应激蛋白来抵抗LT损伤。例如,细胞色素P450(P450s)参与油菜素内酯的生物合成,油菜素内酯可增加幼苗的耐寒性和抗逆性。

BURP家族基因对适应不利和多变环境的植物有积极作用,例如,水稻中的BURP结构域蛋白(OsBURP16)可以降低果胶含量和细胞粘附,同时增加对生物胁迫的不敏感性。转录因子可以通过识别部分启动子功能元件激活靶基因的表达,引起LT相关代谢途径的变化。

研究表明,转录因子包括AP2 / ERF,NAC,WRKY,MYB,bZIPZFP等。其在特异性结合靶基因的顺式作用元件中发挥作用,从而调节下游基因响应LT信号的表达。此外,植物中LT相关基因(如脱水响应蛋白、热休克蛋白70、乙烯反应转录因子、冷调节413质膜蛋白和LT诱导蛋白)的下调对于适应LT至关重要。

蛋白磷酸酶2Cs(PP2Cs)是蛋白磷酸酶的一个亚家族,广泛参与应激信号的传递。研究表明,ZmPP2C2基因在玉米中的过表达可以通过激活抗氧化系统并减少H2O2在细胞中,AtPP2Cs的转录水平由LT应激诱导。

植物对LT胁迫的响应是多个基因表达的共同结果,涉及多个基因的表达,具有复杂的调控网络。了解与LT反应相关的基因的作用和功能将有助于提高植物的耐寒性。过去,人们已经意识到玉米的耐寒性存在基因型差异,对其耐寒机制进行了大量研究。然而,关于种子萌发过程中LT耐受性的遗传机制的研究较少。

本研究以糯玉米自交系N28和N67为材料,测定LT处理下糯玉米种子萌发过程中的表型和生理生化物质。同时,利用转录组测序和代谢组学技术发现了关键的候选基因,为培育具有LT耐受性的新品种奠定了理论基础。

实验材料N28和N67分别在25 °C的NT和15 °C的LT下萌发。萌发3 d后,N28和N67在NT的芽长无显著差异,但在LT处差异显著。NT条件下28个自交系种子萌发率和能量正常,而LT条件下种子萌发率和能量显著下降。结果表明,N67和N1的耐寒性存在显著差异。

为分析LT萌发下N28和N67的表型差异,检测了NT和LT条件下N28和N67的萌发率(GR)、萌发能(GE)、萌发指数(GI)、活力指数(VI)、根长(RL)、芽长(BL)、鲜重(FW)和干重(DW)等指标。

这些指标通过方差分析进行分析。如表所示,NT条件下N28和N67的表型指标无显著差异,而LT条件下差异显著。在LT下,N28的指数显著高于N67,如GR、VI、BL、FW和DW,以及GE、GI和RL。上述结果表明,LT抑制种子萌发,N28的耐寒性显著大于N67。

植物细胞会经历一系列的变化,产生各种物质,用于抵抗或适应逆境,从而在逆境应激下维持正常的生理功能。N28和N67分别在15和25 °C萌发,萌发0、24、48、72和96 h后取样。

测定了LT胁迫下N28和N67在不同时间的电子电导率(EC)、丙二醛(MDA)、超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶(POD)、脯氨酸(PRO)和可溶性糖(SS)含量的变化。随着萌发时间的延长,所有生理指标均呈上升趋势。

在LT胁迫下,N28和N67的SOD和CAT差异无统计学意义;LT胁迫下48 h后可溶性糖(SS)和EC含量差异显著;LT胁迫下72 h后POD和PRO含量差异显著;LT胁迫下24和48 h后MDA含量差异显著。研究发现,在LT胁迫下,N28比N67积累了更多的保护物质,这可能是N28比N67更耐寒的原因。

本研究通过对148个样本的转录组测序分析获得09.18 Gb的清洁数据,每个样本的清洁数据大于6Gb。为了保证分析质量,对原始读数进行过滤,以获得高质量的干净读数。我们总共得到 9.9 × 108高质量干净读取。

通过HISAT73软件将高质量的清洁读数映射到玉米B2参考基因组。本研究共鉴定出37,870个基因,检出10,423个新基因。这些新发现的基因仍需要进一步研究,以探索它们在糯玉米中的功能。为了真实反映转录本的表达水平,需要对每个样本中的映射读段数和转录本长度进行归一化。FPKM用作衡量转录本或基因表达水平的指标。

基因表达受环境影响,并随时间变化。分析了LT萌发下N28和N67的DEGs。结果如表2所示。与各非萌发对照相比,LT萌发下N9265和N7948分别有6752和6487 DEGs上调,28和67 DEGs上调。LT萌发下N5918和N28之间有67个DEGs,其中上调3261个,下调DEGs为2657个。这些结果还表明,在LT胁迫下,N28和N67之间的基因表达存在显著差异。

MC28和MC67是指N28和N67的非发芽对照样品;ML28和ML67分别指在LT萌发的N28和N67样品。向下代表向下调节。向上代表向上监管。

为了验证RNA-seq数据,我们选择了20个候选DEG进行qRT-PCR。这些DEG参与植物激素信号转导,苯丙烷生物合成,类黄酮生物合成,氨基酸合成,过氧化氢分解和脂质代谢。它还包括一些膜蛋白基因和转录因子基因。

这些DEG包括LT处理的样品和非萌发对照之间的上调和下调基因。qRT-PCR分析的所有候选基因的表达谱与RNA-seq获得的表达谱一致。表明RNA-seq结果是可靠的。

基因本体(GO)知识库是世界上最大的基因功能信息来源。GO分析是大规模分子生物学和遗传学实验计算分析的基础。我们在N16和N017中鉴定了14,435和28,67个DEGs,与LT萌发下的非萌发对照组进行了比较。

我们分析了这些DEG,以了解它们的调节机制。这些DEGs主要分为三类GO:细胞成分,分子功能和生物过程。这些 DEG 被注释到 GO 数据库中,用于功能注释和富集分析。

GO术语“单羧酸生物合成过程”、“水解酶活性、水解O-糖基化合物”、“次级活性跨膜转运蛋白活性”和“细胞对生长素刺激的反应”在N28基因集中富集最高,GO术语“水解酶活性,水解O-糖基化合物”、“单羧酸生物合成过程”、“细胞多糖代谢过程”和“对氮化合物的反应”是其中富集度最高的N67中的基因集。

N28和N67在LT萌发下可能具有共同的调控机制,如“单羧酸生物合成过程”和“水解酶活性,水解O-糖基化合物”。在N28中,大多数DEG被归类为“单羧酸生物合成过程”,但大多数DEG被归类为N67中的“水解酶活性,水解O-糖基化合物”。

LT萌发下N5918和N67之间有28个DEGs。GO术语“氧化还原酶活性,作用于配对供体,掺入或还原分子氧”,“微管细胞骨架”,“水解酶活性,水解O-糖基化合物”和“药物分解代谢过程”是高度富集的。 N67和N28之间高度丰富的GO项可能导致电阻差异,但仍需进一步研究以阐明电阻差异的机制。

KEGG将基因组信息和高级功能信息有机结合,对基因组测序和其他高通量测序产生的大数据进行系统分析。与各非萌发对照相比,采用KEGG在LT萌发下分析N28和N67中鉴定的DEGs。

“代谢途径”、“次生代谢产物的生物合成”、“植物激素信号转导”和“苯丙类生物合成”是N28中富集度最高的不同基因,“代谢途径”、“次生代谢产物的生物合成”、“植物激素信号转导”和“植物-病原体相互作用”是N67中富集度最高的不同基因。

“次生代谢物的生物合成”和“植物激素信号转导”等相同的途径可能极大地有助于抵抗N28和N67的逆境。“MAPK信号通路-植物”和“淀粉和蔗糖代谢”也富集在N28和N67中。据报道,不同的蛋白激酶家族(如MAPKs)被渗透胁迫激活。这些蛋白激酶和蔗糖代谢可能在糯玉米对LT胁迫的反应中起至关重要的作用。

“代谢途径”、“次生代谢物的生物合成”、“苯丙类生物合成”和“半乳糖代谢”在ML67_VS_ML28中富集最显著(图)。6). N67和N28中“半乳糖代谢”的富集度不高,但N28中的富集度高于N67(图)。6). 这些途径可能是N28对LT的抵抗力高于N67的原因之一。

当植物面临恶劣的生活环境时,会以多种方式调节机体的生理代谢活动,TFs的调节是一种重要的调节方法。分子和遗传研究发现,许多TFs在调节基因表达方面很重要,以在植物受到逆境压力时增强植物抗性。本研究在LT萌发下在N447和N28之间检测到67个不同表达的TFs,它们被归类为65个科,TF家族的前15个如图所示。7. 其中,bHLH、AP2、MYB、NACbZIP占TF总数的35.12%。

转录和代谢组学的结合分析可以帮助我们系统、全面地研究生物分子的功能和调控机制,最终实现对生物变化趋势和方向的全面认识。为了理解差异代谢产物与差异基因的相关性,我们选取Pearson相关系数大于0.8的结果对差异基因和差异代谢产物进行相关性分析,并制作了聚类热图。

我们在对照和冷胁迫N2826样品之间鉴定了与9种代谢物相关的28个差异表达基因。对于N67,有1778个与7种代谢物相关的差异表达基因。其中,黄酮类化合物、木脂素和香豆素仅存在于N28中,这些代谢产物在LT萌发下可能赋予N28更高的耐寒性。

低温胁迫会影响植株的一系列形态和生理变化,延缓玉米种子萌发,对其生长、产量和品质影响很大。LT胁迫会增加活性氧(ROS)的积累,植物中的ROS清除酶主要是抗氧化酶,如SOD、POD和CAT等。

此外,可以增加植物中脯氨酸(PRO)和可溶性糖(SS)的含量,以提高对LT胁迫的抵抗力。本研究显示,N28中SOD、POD、CAT、PRO和SS的含量显著高于N67。电导率(EC)和MDA的含量可以反映膜渗透率的指标,可用于衡量植物的耐寒程度。

EC和MDA越高,植物受低温的损害就越严重。在我们的研究中,N67中的EC和MDA含量高于N28。因此,N28和N67在低温下的抗性不同可能是由于抗氧化酶的活性不同,渗透保护剂的含量不同。

植物激素对植物的生长、发育和新陈代谢很重要。先前的研究表明,植物激素在帮助植物适应不利环境条件方面起着关键作用,并参与植物对LT胁迫的反应。研究表明,低温胁迫会影响植物的生长发育。

4 °CLT处理可增加水稻内源性吲哚乙酸(IAA)含量,冷胁迫强烈诱导OsYUCCA2、OsYUCCA3、OsYUCCA6和OsYUCCA7的转录水平。 本研究显示,植物信号转导通路N28和N67均显著富集,冷胁迫下生长素、赤霉素、乙烯、水杨酸和脱落酸等多个相关基因均受到调控。

研究表明,LT胁迫可以诱导植物中乙烯含量的增加。乙烯作为信号分子,可以促进防冻蛋白的合成,提高冬黑麦的耐寒性。在我们的研究中也发现了相同的结果。与N67相比,乙烯合成负调节因子ETR在N28中的表达水平显著下调,这可能与种子中乙烯合成的改善有关。